Imagerie in vivo

Principe

L'imagerie in vivo est la visualisation non invasive d'organismes vivants à des fins de recherche ou de diagnostic. On y retrouve en général deux domaines clés : imagerie anatomique/morphologique et imagerie moléculaire. En imagerie moléculaire, les fonctions cellulaires ou les procédés moléculaires sont visualisés, généralement à l'aide de biomarqueurs.  En imagerie anatomique, aucun marqueur n'est utilisé et la visualisation est basée sur les propriétés intrinsèques des tissus et des organes à observer, comme l'atténuation des rayons X lors de la tomographie assistée par ordinateur.

Avec l'imagerie moléculaire in vivo, plusieurs événements peuvent être suivis.

  • Suivi d’évènements biologiques (moléculaires, cellulaires, métaboliques, génétiques, …)
  • Analyses structurales et/ou fonctionnelles
  •  Suivi de processus physiopathologiques (croissance tumorale, inflammation,
    infection, …)
  •  Suivi de cellules / agent pathogène, interactions
  •  Biodistribution de molécules
  •  Evaluation de l’efficacité de candidats thérapeutiques
  •  Etudes pharmacodynamiques, pharmacocinétiques

Par rapport aux autres méthodes de mesure des procédés moléculaires, l'imagerie in vivo présente plusieurs avantages majeurs:

  • Elle fournit la localisation spatiale du procédé ou de la molécule.
  • Elle est dynamique: les changements au fil du temps peuvent être suivis.
  • Elle peut être répétée plusieurs fois chez un même individu.
  • Elle permet d'observer un procédé (principalement) non perturbé, c'est-à-dire que les résultats sont physiologiquement pertinents.

Ces avantages font de l'imagerie in vivo une technologie très utile dans de nombreux domaines de recherche et de diagnostic.

Instruments disponibles :

Campus Pasteur

Description :

  • Marque : IVIS Lumina XRay (Perkin Helmer)
  • Logiciel : Living Image 4.3.1
  • Excitations : lampe de fluorescence SHOPT (Visible et IR, privilégier les longueurs d’ondes IR)
  • Emissions : standard Emission Filter wheel et Low Range Emission filter wheel (500 à 620nm)
  • Modalité : Photographie | Bioluminescence | Fluorescence | Radiographie/RayonsX
  • TL : BF
  • Détecteurs : CCD Andor (3 souris / prise de vues)
  • Chambre d'incubation Temp. et CO2 : Okolab
  • Environnement : platine chauffé, système d’anesthésie gazeux à l’isoflurane
  • Accessoires : acquisition multi spectrale en fluorescence
  • A2 : communication par passe plat avec le A2 et maintien du confinement en boite Biospace type 3

Applications :

  • Visualisation d’évènements biologique sur petit animal corps entier, de manière non invasive, au cour du temps. En adéquation avec les 3Rs :
    • Études longitudinales
    •  Statistiques : moins de variations
    •  « Réduction » du nombre d’animaux nécessaires
    •  Méthodes non-invasives
    •  « Raffinement »
  • Applications en recherche préclinique :

    • Suivi de processus physiopathologiques (croissance tumorale, inflammation,
      infection, …)
    • Suivi d’évènements biologiques (moléculaires, cellulaires, métaboliques, génétiques, …)
    • Suivi de cellules / agent pathogène, interactions
    • Analyses structurales et/ou fonctionnelles
    •  Biodistribution de molécules
    •  Evaluation de l’efficacité de candidats thérapeutiques
    •  Etudes pharmacodynamiques, pharmacocinétiques

Localisation : Campus Institut Pasteur Lille - Animalerie IPL

Contact : Sophie Salomé-Desnoulez | 03.20.87.10.40

Tarif : 25€/heure

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