Microscopie champs-large

Principe
Principe

Cette technique peu couteuse est adaptée aux observations longues sur des échantillons peu épais ou à faible grossissement. Les échantillons peuvent être observé en fluorescence, en transmission s’ils sont colorés, ou par création de contraste de phase ou interférentiel (DIC).

La microscopie champs large est une technique simple qui induit peu de photoblanchiment comparé à la microscopie confocale. Elle est cependant moins adaptée pour les échantillons épais et études de morphologie en 3D à cause du flou dû à la superposition des plans d’observation sur l’image. L'utilisation du module Apotome durant l'acquisition permet de réduire cet effet.
Les images peuvent également être déconvoluées après acquisition via Huygens afin d’en augmenter la résolution et le contraste.

Image de gauche : cellule HeLa en champs-large, Image de droite : cellule HeLa en Apotome. CellMask Blue / Phalloidin Atto488 / TO-PRO

Instruments disponibles :

Campus Santé : Leica DMi8 avec chambre Okolab
Campus Santé : Zeiss AxioImager M2 - 4 Slides Fluo/Color Apotome
Campus Santé : Loupe binoculaire fluo Leica MZ10F

Campus CS

  • Marque : Nikon
  • Statif : Eclipse Ti2-E
  • Type de statif : Inversé
  • Logiciel : NIS
  • Source :  HXP 120
  • Filtres : DAPI / FITC / TRITC (autres filtres sur demande)
  • Lumière transmise : BF / Contraste de Phase
  • Caméra 1: Couleur Nikon DS-Ri
  • Caméra 2 : Noir&Blanc Andor LucaR
  • Objectifs : 4x | 10x | 20x | 40x | 60x
  • Platine : Motorisée
  • Supports : Lames / Plaques multi-puits / Lames multi-chambres
  • Z-Stacks : Oui
  • Mosaïques : Oui
  • Multi-positions : Oui

Applications :

  • Observations et Acquisitions 4D d'échantillons en champ large
  • Détection simultanée multi-couleurs de 400nm à 750nm.
  • Transmission, contraste de phase
  • Acquisitions automatisées dans le temps, multi-position et mosaïque.

 

Localisation : Cité Scientifique - Bâtiment SN3, Sous-sol

Contact: Elodie Richard | 03.20.43.41.03

Tarif : 10€/heure

Réserver

Campus Santé

Description :

  • Marque : Leica DMi8
  • Type de statif : Inversé
  • Logiciel : LAS X
  • Source HXP Fluo (nm) : 405 / 488 / 561 / 633
  • TL : BF / DIC / Ph
  • Modalité : Microscope champs-large
  • Détecteur : Caméra Orca Flash 4
  • Objectifs : 10x/0.3 | 20/0.8 | 40x/1,4 (oil) | 63x/1,4 (oil)
  • Platine : Motorisée
  • Chambre d'incubation Temp. et CO2 : Okolab
  • Supports : Lames / Plaques multi-puits / Lames multi-chambres
  • Z-Stacks : Oui
  • Mosaïques : Oui
  • Multi-positions : Oui
  • Maintien de focus : AFC

Applications :

  • Observation 2D ou 3D plein champs d'échantillons
  • Détection simultanée de 4 couleurs de 400nm à 750nm.
  • Transmission, contraste interférentiel de Nomarski (DIC).
  • Acquisitions automatisées dans le temps, multi-position et mosaïque.
  • Système d’Autofocus intégré pour éliminer la dérive en Z.
  • Incubateur contrôlant la température et l'apport en CO2.

Localisation : Faculté de Médecine - Bâtiment Plateformes-Cancer

Contact : Meryem Tardivel | Antonino Bongiovanni | 03.20.62.34.93

Tarif : 10€/heure

Réserver

Description :

  • Marque : Zeiss Axio Imager M2
  • Type de statif : Droit
  • Logiciel : Zen Blue
  • Source Colibri Fluo (nm) : 405 / 488 / 561 / 633
  • TL : BF / DIC
  • Modalité : Microscope champs-large
  • Détecteur : Caméra 506 (Fluo) | Caméra 512 (Visible)
  • Objectifs : 10x/0.3 | 20/0.8 | 40x/0,9| 100x/1,4 (oil)
  • Platine : Motorisée
  • Supports : 1 Lame / 4 Lames
  • Z-Stacks : Oui
  • Mosaïques : Oui
  • Multi-positions : Oui
  • Accessoire : Module Apotome 2

Applications :

  • Observation 2D ou 3D plein champs d'échantillons IF ou IHC.
  • Observation de l'échantillon par le dessus.
  • Amélioration de la résolution par via sectionnement optique par l'Apotome 2
  • Détection simultanée de 4 couleurs de 400nm à 750nm.
  • Transmission, contraste interférentiel de Nomarski (DIC).
  • Acquisitions automatisées multi-position et mosaïque.

Localisation : Faculté de Médecine - Bâtiment Plateformes-Cancer

Contact : Meryem Tardivel | Antonino Bongiovanni | 03.20.62.34.93

Tarif : 10€/heure

Réserver

Description :

  • Marque : Leica MZ10F
  • Type de statif : Droit
  • Logiciel : LAS X
  • Source Lumencor Fluo (nm) : 405 / 488 / 561 / 633
  • TL : Illumination par le dessous ou en col de cygne
  • Modalité : Loupe binoculaire
  • Détecteur : Caméra Leica DFC 7000 (couleur)
  • Objectifs : Tourelle ajustable jusqu'à 8x
  • Platine : Manuelle

Applications :

  • Observation de gros échantillons IF ou Visible
  • Observation de l'échantillon par le dessus.
  • Détection simultanée de 4 couleurs de 400nm à 750nm.
  • Transmission ou col de cygne

Localisation : Faculté de Médecine - Bâtiment Plateformes-Cancer

Contact : Meryem Tardivel | Antonino Bongiovanni | 03.20.62.34.93

Tarif : Gratuit

Réserver

Campus Pasteur

Description :

  • Marque : Zeiss AxioObserver Z1
  • Type de statif : Inversé
  • Logiciel : Zen Blue 3.4 Pro
  • Source: Colibri 7 led - Fluo (nm): 385-430-475-511-555-590-630
  • TL : BF / DIC / Ph
  • Modalité : Microscope champs-large en fluorescence et lumière blanche avec déconvolution
  • Détecteur : Caméra Prime 95b et Caméra AxioCam 305 Color
  • Objectifs : 5x/0.25 | 10x/0.3 DIC | 40x/1,3 (oil) DIC| 63x/1,4 (oil) DIC | 32x/0.4 Ph | 10x/0.3 Ph | 100x/1,46 (oil)
  • Platine : Motorisée
  • Chambre d'incubation Temp. et CO2 : Pecon - chambre XL et insert chauffant 
  • Supports : Lames (x4 lames) / Plaques multi-puits / Lames multi-chambres
  • Z-stacks: Oui
  • Mosaïques : Oui
  • Multi-positions : Oui
  • Maintien de focus: definited Focus 1

Applications :

  • Observation 2D ou 3D plein champs d'échantillons fixés ou vivants.
  • Observation en séquentiel de 4 couleurs de 400nm à 750nm
  • Déconvolution
  • Imagerie de fluorescence combinée avec une imagerie en lumière blanche (transmission, contraste interférentiel de Nomarski (DIC)
  • Motorisation adpatée pour le scan de lames (acquisition en mosaïque, portoir 1 ou 4 lames)
  • adapté à une imagerie temporelle sur plusieurs heures, plurisuers échantillons (acquisitions automatisées dans le temps, multi-positions, portoir de plaques, boites 35mm ou lames multi-chambres, système de maintien du focus, environnement contrôlé en température et CO2

Localisation : Institut Pasteur de Lille - Institut de Biologie de Lille, 2ème étage

Contact : Sophie Salomé-Desnoulez | 03.20.87.10.40

Tarif : 10€/heure

Réserver

Description :

  • Marque : Zeiss Axio Axioplan 2
  • Type de statif : Droit
  • Logiciel : Zen Blue
  • TL : BF / DIC
  • Modalité : Microscope champs-large
  • Détecteur : Caméra ICc5 (Visible)
  • Objectifs : 5x/0.16 | 20/0.8 | 40x/1,3 (oil)| 63x/1,3 (oil) | 100x/1,4 (oil)
  • Platine : Motorisée
  • Supports : 1 Lame
  • Mosaïques : Oui
  • Multi-positions : Oui

Applications :

  • Observation 2D plein champs d'échantillons IHC.
  • Observation de l'échantillon par le dessus.
  • Transmission, contraste interférentiel de Nomarski (DIC).
  • Acquisitions automatisées multi-position et mosaïque.

Localisation : Institut Pasteur de Lille - Institut de Biologie de Lille, 2ème étage

Contact : Elisabeth Werkmeister | Sophie Salomé-Desnoulez | 03.20.87.10.40

Tarif : 12€/heure

Réserver