Vidéo-microscopie
Principe
La vidéomicroscopie est une technique permettant le suivi au long cours de processus biologiques rapide ou lente. Les applications concernent par exemple la cinétique des interactions cellulaires, de la différenciation, la survie ou la croissance axonale et l'utilisation de dispositif de micro-fluidique. Les conditions physiologiques sont parfaitement maintenues grâce à une enceinte régulant la température et le CO2. Les systèmes sont généralement couplés à des platines motorisées permettant le l'acquisition de plusieurs champs en simultané.
Les images haute définition des cellules obtenues peuvent ensuite être analysées dynamiquement.
Instruments disponibles :
Campus CS
Campus Santé
Description :
- Marque : Leica DMi8
- Type de statif : Inversé
- Logiciel : LAS X
- Source HXP Fluo (nm) : 405 / 488 / 561 / 633
- TL : BF / DIC / Ph
- Modalité : Microscope champs-large
- Détecteur : Caméra Orca Flash 4
- Objectifs : 10x/0.3 | 20/0.8 | 40x/1,4 (oil) | 63x/1,4 (oil)
- Platine : Motorisée
- Chambre d'incubation Temp. et CO2 : Okolab
- Supports : Lames / Plaques multi-puits / Lames multi-chambres
- Z-Stacks : Oui
- Mosaïques : Oui
- Multi-positions : Oui
- Maintien de focus : AFC
Applications :
- Observation 2D ou 3D plein champs d'échantillons
- Détection simultanée de 4 couleurs de 400nm à 750nm.
- Transmission, contraste interférentiel de Nomarski (DIC).
- Acquisitions automatisées dans le temps, multi-position et mosaïque.
- Système d’Autofocus intégré pour éliminer la dérive en Z.
- Incubateur contrôlant la température et l'apport en CO2.
Localisation : Faculté de Médecine - Bâtiment Plateformes-Cancer
Contact : Meryem Tardivel | Antonino Bongiovanni | 03.20.62.34.93
Tarif : 12€/heure
Campus Pasteur
Description :
- Marque : Zeiss AxioObserver Z1
- Type de statif : Inversé
- Logiciel : Zen Bleu 2.3
- Source colibri 7 Led - Fluo (nm) : 385-430-475-511-555-590-630
- TL : BF / DIC / Ph
- Modalité : Microscope champs-large et déconvolution
- Détecteur : Caméra Prime 95b
- Objectifs : 5x/0.25, 10x/0.3 DIC, 40x/1.3 oil DIC, 63x/1.4 oil DIC, 32x/0.4 Ph, 10x/0.3 Ph, 100x/1.46 oil
- Platine : Motorisée
- Chambre d'incubation Temp. et CO2 : Pecon - chambre XL et insert chauffant
- Supports : Lames / Plaques multi-puits / Lames multi-chambres
- Z-Stacks : Oui
- Mosaïques : Oui
- Multi-positions : Oui
- Maintien de focus : definited Focus 1
- Applications : déconvolution
Applications :
- Observation 2D ou 3D plein champs d'échantillons fixés ou vivant
- Observation en séquentiel de 4 couleurs de 400nm à 750nm.
- Imagerie de fluorescence combinable avec une imagerie en lumière blanche (transmission, contraste interférentiel de Nomarski (DIC)). Motorisation adaptée pour le scan de lames (acquisition en mosaïque, portoir 1 ou 4 lames)
- Adaptée à une imagerie temporelle sur plusieurs heures, sur plusieurs échantillons (acquisitions automatisées dans le temps, multi-position, portoir de plaques, boittes 35mm ou lames multi-chambres, système de maintien de focus, environnement contrôlé en température et CO2.
Localisation : Campus Pasteur – Batiment IBL – 2éme étage
Contact : Sophie Salomé-Desnoulez | 03.20.87.10.40